Генитальная хламидийная инфекция — наиболее частая причина хронических воспалительных заболеваний половых путей у женщин. Она не имеет характерной клинической картины, часто протекает бессимптомно, что затрудняет своевременную диагностику заболевания, предотвращение его распространения и предупреждение осложнений. Chlamydia trachomatis передается преимущественно половым путем. Возможные пути инфицирования плода: вертикальное распространение возбудителя из нижних отделов половых путей, трансплацентарное проникновение хламидий к плоду, заражение новорожденного от больной матери при прохождении через родовой канал. Chl. trachomatis поражает преимущественно клетки цилиндрического эпителия и локализуется у женщин в цервикальном канале. Однако Chl. trachomatis может поражать эндометрий, маточные трубы, уретру, вызывать конъюнктивит, периаппендицит, перигепатит, венерическую лимфогранулему, артрит, пневмонии и заболевания кожи у новорожденных. Осложнениями хламидийной инфекции у женщин являются бесплодие или эктопическая беременность, вызванные спаечным процессом в малом тазу, обструктивными изменениями и нарушением проходимости маточных труб. Спаечный процесс в малом тазу часто выступает причиной хронических тазовых болей. Особенно неблагоприятное влияние оказывает хламидийная инфекция на течение беременности, являясь причиной спонтанных выкидышей, неразвивающейся беременности, несвоевременного излития околоплодных вод и преждевременных родов [1, 3]. Внутриутробное инфицирование плода Chl. trachomatis приводит к задержке его внутриутробного развития и рождению детей с низкой по отношению к сроку гестации массой тела.

Клиническое течение генитального хламидиоза у женщин

При хламидийном поражении нижних отделов половых путей больные могут предъявлять жалобы на зуд наружных половых органов, дизурические расстройства. Хламидиозу нижних отделов половых путей сопутствует нарушение влагалищного биоценоза. Изменение микрофлоры влагалища является индикатором и следствием инфицирования хламидиями. При хламидийном цервиците наблюдаются слизисто-гнойные или обильные слизистые выделения, шейка матки отечная, гиперемированная, возможно наличие псевдоэрозии. Хламидийные кольпиты встречаются у девочек и женщин в постменопаузе.

Сальпингиты, вызванные Chl. trachomatis, протекают стерто, длительно, развиваются отек эпителия и слипчивый процесс в маточных трубах с нарушением их перистальтики. Хронические, длительно протекающие аднекситы сопровождаются нарушениями менструальной функции. Интраабдоминальное распространение хламидий может вызвать периаппендицит, перигепатит. Больные предъявляют жалобы на боли в правом подреберье, повышение температуры. Поражения суставов обусловлены диссеминированным распространением хламидий или аутоиммунными реакциями, при этом чаще страдают крупные суставы нижних конечностей.

У детей Chl. trachomatis вызывают генитальные и экстрагенитальные заболевания. Часты семейные случаи хламидиоза, когда дети инфицируются от родителей бытовым путем при использовании предметов личной гигиены. У девочек поражение половых путей Chl. trachomatis проявляется вульвитом или вульвовагинитом.

Среди экстрагенитальных заболеваний, вызванных Chl. trachomatis, — конъюнктивит, воспаление дыхательных путей, у новорожденных отмечаются гнойничковые высыпания на коже.

У женщин, больных воспалением нижних отделов половых путей, Chl. trachomatis обнаружены в 21—27% случаев [6, 14]. Поражение шейки матки N. gonorrhoeae или Chl. trachomatis, клинически проявляющееся слизисто-гнойным отделяемым, в 49,5% случаев сочетается с эндометритом [19].

Установлено, что наличие сывороточных антител IgG против Chl. trachomatis ассоциируется с высоким риском инвазивного плоскоклеточного рака шейки матки [13].

Сопутствующая экстрагенитальная патология также может быть вызвана Chl. trachomatis. У 25% больных обструктивным пиелонефритом Chl. trachomatis выявлены в моче, взятой во время оперативного лечения из верхнего отдела мочеточника или почки выше места обструкции [10].

Среди женщин, страдающих бесплодием, в образцах, взятых из шейки матки, методом ПЦР ДНК Chl. trachomatis выделена у 22,45%, из маточных труб — у 15,66%, что достоверно чаще (Р<0,05), чем в контрольной группе (3,3%) [15]. По другим данным, у 35% пациенток с бесплодием и высоким титром антител против Chl. trachomatis лапароскопически выявлена патология маточных труб [22]. Среди женщин с бесплодием трубного генеза антиген Chl. trachomatis в эндоцервиксе или специфические антитела IgA, IgG в крови обнаружены в 92% случаев, антитела IgG против Chl. trachomatis — в 61%, при других причинах бесплодия частота хламидиоза достигает 71%. Антитела IgG против Chl. trachomatis выявлены у 92% пациенток, обследованных для проведения экстракорпорального оплодотворения [20].

Таким образом, частота генитального хламидиоза при бесплодии составляет от 22 до 92%. Вместе с тем у больных хроническим генитальным хламидиозом не всегда развиваются слипчивые процессы в малом тазу и трубно-перитонеальное бесплодие. При бесплодии хламидиоз диагностируют с одинаковой частотой как при поражении маточных труб, так и при интактных маточных трубах.

От 2,1 до 14,8% женщин во время беременности болеют хламидиозом [5, 11, 21]. На основании проведенных нами исследований [2] установлено, что хроническая латентная хламидийная инфекция матери осложняет течение беременности, родов, способствует поражению ЦНС в виде гипоксическо-ишемической энцефалопатии плода и новорожденного. Хроническая хламидийная инфекция способствует нарушению эндокринной функции фетоплацентарной системы. У беременных хламидийная инфекция протекает преимущественно в бессимптомной латентной форме и приводит к внутриутробному инфицированию плода.

Диагностика урогенитального хламидиоза часто вызывает затруднения по следующим причинам:

·              отсутствие специфических клинических симптомов;

·              необходимость использования специальных лабораторных методов диагностики;

·              высокая стоимость высокочувствительных и специфичных методик, что ограничивает их широкое использование;

·              низкая достоверность и субъективизм при учете методов иммунофлюоресценции, используемых в практической медицине.

Эффективность диагностики хламидиоза и его осложнений повышается путем выделения групп риска инфекции и проведения последовательных диагностических мероприятий.

Критерии отнесения в эти группы следующие:

1.      Отягощенный акушерский анамнез.

2.     Урогенитальный хламидиоз или другие заболевания, передаваемые половым путем, в анамнезе у женщины или у полового партнера.

3.      Отягощенное течение настоящей беременности.

4.      Заболевания новорожденного.

5.      Хронические воспалительные заболевания половых путей.

6.      Бесплодие первичное или вторичное.

7.      Эктопическая беременность.

8.      Экстрагенитальные заболевания (воспалительные заболевания дыхательных путей, заболевания суставов, конъюнктивиты).

Понятие «отягощенный акушерский анамнез» у женщин с риском внутриутробной инфекции включает:

·              преждевременные роды;

·              спонтанные выкидыши;

·              рождение детей с низким по отношению к сроку гестации весом;

·              антенатальная и постнатальная гибель плода;

·              прерывание беременности по медико-генетическим показаниям или рождение детей с врожденными пороками развития.

Полученные нами данные обследования новорожденных и детей первого года жизни показали, что к группе высокого риска внутриутробной инфекции следует также относить детей, родившихся в состоянии асфиксии или с признаками гипоксической энцефалопатии.

Показаниями для обследования беременных на внутриутробную инфекцию являются следующие заболевания и осложнения беременности:

·              истмико-цервикальная недостаточность;

·              перманентная угроза прерывания беременности;

·              структурные или функциональные изменения плаценты, диагностированные УЗ-сканированием или лабораторно;

·              синдром задержки внутриутробного развития плода;

·              многоводие или маловодие.

Для своевременного начала и правильного выбора этиотропной терапии показано обследование матери и новорожденного при следующих осложнениях родов и послеродового периода:

— несвоевременное вскрытие плодных оболочек;

— нарушение обратного развития матки после родов;

— морфологические изменения последа.

Хронические воспалительные заболевания половых путей, эктопическая беременность в анамнезе являются показанием для обследования женщин на урогенитальный хламидиоз до планируемой беременности. Если пациентка не была обследована и наступила беременность, обследование необходимо провести в ранние сроки для выбора правильной тактики ведения беременности. В результате хронических воспалительных заболеваний половых органов возникает первичное или вторичное бесплодие, которое обусловлено не только формированием спаек в малом тазу и изменением проходимости маточных труб, но и нарушением гормональной регуляции процессов овуляции.

Как показали данные наших исследований [2], у половых партнеров женщин с хламидиозом гениталий в 80% случаев также выявлена хламидийная инфекция. При хламидийных вульвовагинитах у девочек 1,5 — 4 лет генитальная хламидийная инфекция у их матерей обнаружена в 85% случаев. Таким образом, случаи семейного заболевания хламидиозом являются основанием для проведения обследования членов семьи при заболевании одного из них.

Лабораторная диагностика хламидиозов основана на выявлении возбудителя или его антигенов, ДНК, антихламидийных антител. Метод иммунофлюоресценции (МИФ) основан на обнаружении антигена Chl. trachomatis в биологических материалах после обработки препаратов специфическими антителами и позволяет выявить антиген Chl. trachomatis в соскобах слизистых оболочек уретры, цервикального канала. Этот метод занимает немного времени, не требует серийных постановок и может использоваться для экспресс-диагностики в практической медицине. Прямая иммунофлюоресценция позволяет выявить в мазках элементарные и/или ретикулярные тельца в виде флюоресцирующих зеленых включений на фоне красно-оранжевой цитоплазмы или во внеклеточном пространстве. МИФ не сложен в выполнении, относительно недорог и поэтому используется как скрининговый. Чувствительность и специфичность МИФ составляют 65—90% и 85—90% соответственно. Недостатком метода является отсутствие объективных критериев оценки качества исследования, а также высокий процент как ложноположительных, так и ложноотрицательных результатов.

При хронических хламидийных аднекситах или инфекции другой локализации метод иммунофлюоресценции не всегда информативен, так как антиген, находящийся в верхних отделах половых путей, при взятии материала для исследования не попадает в биопробу. В этих случаях применяются методы определения в крови специфических антител против Chl. trachomatis с помощью иммуноферментного анализа (ИФА). При использовании разных коммерческих тест-систем антитела IgG и IgA против Chl. trachomatis обнаружены у 76—91% женщин, больных хламидийным цервицитом, и у 9—18% здоровых [17]. Метод ИФА обладает высокой чувствительностью и специфичностью, автоматизирован и позволяет исследовать одновременно большое количество сывороток.

Метод ИФА также может быть использован для обнаружения антигена хламидий в пробах, полученных из эндоцервикальных и уретральных мазков-соскобов. Метод экономен, позволяет проводить одновременно до 90 анализов, достаточно специфичен и чувствителен, что обусловливает широкое его использование в рутинной диагностике хламидийной инфекции. Выявление в сыворотке крови специфических антител классов IgG, IgA, IgM с определением их титра позволяет установить стадию заболевания, обосновать необходимость антибактериального лечения и оценить его эффективность. При первичной острой инфекции вначале в крови появляются антитела IgM, по мере развития заболевания титр антител возрастает. Наличие в крови только антител IgM против Chl. trachomatis при возрастании их титра и при отсутствии специфических антител классов IgА и IgG свидетельствует в пользу первичной острой инфекции. При прогрессировании хламидиоза в крови появляются специфические антитела класса IgА, а затем антитела IgG против Chl. trachomatis в нарастающих титрах, при этом титр антител IgM снижается. В течение короткого периода времени в крови могут одновременно присутствовать IgM и IgА или антитела всех трех классов. В таких случаях для дифференциального диагноза стадии заболевания поможет определение титров антител в динамике.

Серологические исследования особенно ценны для диагностики экстрагенитальных форм хламидиоза, когда затруднительно получить биоматериал, содержащий антиген хламидий (артриты, пневмония, перигепатит и др.). На основании определения титра антител IgG, IgA, IgM против Chl. trachomatis можно оценить эффективность антибактериального лечения — при отсутствии эффекта титр антител остается высоким спустя 1—1,5 мес. Необходимо учитывать, что при повторном инфицировании титр антител IgG будет повышаться. Наличие в крови только антител IgG в течение длительного времени указывает на перенесенную в прошлом инфекцию. Таким образом, для правильного заключения о течении заболевания необходимо исследование парных сывороток, взятых с интервалом не менее 10—14 дней, с определением титров антител классов IgG, IgM, IgА против Chl. trachomatis.

При наличии серологических маркеров хламидийной инфекции для установления локализации процесса наиболее информативен метод полимеразной цепной реакции (ПЦР). При внутриматочной хламидийной инфекции возможно выделение ДНК возбудителя в эндометрии, в ткани хориона [8, 11].

Метод ПЦР основан на выделении и многократном размножении ДНК. Большую ценность он представляет для диагностики латентной инфекции, так как позволяет выявлять ДНК хламидий даже при наличии нескольких микроорганизмов в биологической пробе. Высокая стоимость ПЦР-анализа, необходимость специального оснащения лабораторий ограничивают широкое использование этого метода.

Сравнительный анализ различных методов для диагностики хламидиоза продемонстрировал наибольшую чувствительность ПЦР — 95—100% (МИФ — 85—88%, цитологического — 5%) [4]. Метод ПЦР эффективен для диагностики урогенитального хламидиоза как при симптомном, так и при бессимптомном течении заболевания. Причем исследовать можно и материал из половых путей, и первую порцию мочи [9, 16]. Сравнительная диагностика урогенитального хламидиоза методами ИФА и ПЦР в образцах только мочи и одновременно в моче и эпителии цервикального канала показало высокую эффективность выделения ДНК Chl. trachomatis в первой порции мочи [7]. Для исследования образцов тканей (ткани плодного яйца, соскоб эндометрия) целесообразнее использовать ПЦР. Метод полимеразной цепной реакции применяют также при исследовании архивных биопсийных тканей, фиксированных парафином, для выделения ДНК Chl. trachomatis [12].

«Золотым стандартом» в диагностике хламидийной инфекции считают культуральный метод с использованием чувствительной культуры клеток. Чувствительность культурального метода по сравнению с ПЦР составляет 70—80%, однако он более специфичен. Культуральный метод незаменим для оценки эффективности антибактериального лечения и определения чувствительности хламидий к антибиотикам. В отличие от лабораторных методов, предназначенных для выявления антигена или ДНК хламидий, культуральный метод позволяет обнаружить жизнеспособные микроорганизмы. После антибактериальной терапии с помощью ПЦР или МИФ можно получить ложноположительные результаты, что связано с выявлением нежизнеспособных фрагментов хламидий, которые длительное время остаются в эпителиальных клетках, но при заражении культуры клеток роста не дадут. Метод требует специального оснащения лаборатории и высококвалифицированного персонала, длительность выполнения анализа — до 7 дней, при определении чувствительности микроорганизмов к антибиотикам — до 14 дней, что затрудняет его использование в практической медицине.

При вульвовагинитах у девочек необходимо исследовать отделяемое из половых путей и соскоб эпителия влагалища одним из методов: антиген Chl. trachomatis — с помощью ИФА или МИФ, ДНК Chl. trachomatis — с помощью ПЦР.

Сравнительная характеристика лабораторных методов исследования

Выбор метода для диагностики инфекции, вызванной Chl. trachomatis, осуществляется с учетом характера клинического течения и локализации воспалительного процесса.

Местами локализации Chl. trachomatis, доступными для взятия материала, являются цервикальный канал, уретра. Скрининговые обследования проводят для обнаружения антигена Chl. trachomatis в мазках-соскобах эпителиальных клеток канала шейки матки и мочеиспускательного канала методом иммунофлюоресценции. При локализации воспалительного процесса в верхних отделах половых путей забор материала затруднителен, так как исследованию должны подвергаться клетки эпителия, содержащие хламидии. В ранние сроки после антибактериальной терапии с положительным терапевтическим эффектом могут выявляться нежизнеспособные микроорганизмы (ложноположительный результат МИФ).

Определение ДНК Chl. trachomatis методом ПЦР в эпителиальных клетках цервикального или мочеиспускательного канала проводится для подтверждения диагноза или контроля излеченности. Применение ПЦР возможно на базе крупных клиник и научно-исследовательских учреждений, так как требует специальной подготовки персонала и оснащения лаборатории оборудованием. Диагностика внутриутробной хламидийной инфекции проводится определением ДНК Chl. trachomatis с помощью ПЦР-анализа в амниотической жидкости, полученной путем диагностического амниоцентеза. Метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью. Недостатками метода ПЦР являются высокая стоимость и трудоемкость. Исследованию подвергается биологический материал из очага воспаления, что может встречать затруднения, например при многоводии, врожденной пневмонии у новорожденных и др.

Серологическая диагностика включает качественное и количественное определение специфических антител классов IgM, IgA, IgG. Антитела IgM в крови могут быть выявлены при первичном инфицировании, реинфекции, обострении хронической инфекции. Если для диагностики использован только серологический метод, остается неизвестной локализация инфекционного процесса. Недостатком метода является невозможность диагностики локализации хламидиоза. Для дифференцирования стадии процесса или клинической формы (первичная инфекция или реинфекция, острая или хроническая) нужно исследовать парные сыворотки, взятые с интервалом 2 недели. Сыворотку исследуют на антитела двух классов — IgG и IgM качественным и количественным методом для определения изменений их титра.

Методика взятия биоматериала для исследования

Качество диагностики хламидийной инфекции методами, основанными на определении антигена или ДНК Chl. trachomatis, либо культуральным во многом зависит от правильного забора материала для лабораторного исследования. При взятии биологических проб на Chl. trachomatis из очагов инфекции следует помнить, что возбудитель избирательно поражает цилиндрический эпителий мочеполовых путей. Материал для исследования на хламидии необходимо брать не менее чем через 3 недели после окончания приема антибактериальных препаратов, эффективных в отношении Chl. trachomatis. Для исследования эпителиальных клеток из уретры больные перед взятием материала не должны мочиться в течение 1—1,5 ч. Мазок-соскоб слизистой оболочки цервикального канала необходимо брать на протяжении 1,5 см без крови, что значительно облегчается при использовании специальных одноразовых щеточек. Перед взятием материала из шейки матки следует удалить слизистую пробку ватным тампоном. У девочек для исследования берут материал со слизистой оболочки преддверия влагалища. Взятый материал в зависимости от используемого в дальнейшем метода лабораторной диагностики помещают в стерильную пробирку со стерильным физиологическим или буферным раствором (0,5—1,0 мл) или на предметное обезжиренное стекло.

Для определения методом ИФА антигена Chl. trachomatis в слизистой оболочке шейки матки и уретры берут мазок-соскоб цилиндрического эпителия цервикального и мочеиспускательного канала с помощью ложки Фолькманна или одноразовыми ершиками (цито-щетки). Перед взятием материала марлевым шариком удаляют слизь из наружного зева цервикального канала. Обязательным условием является наличие эпителиальных клеток в исследуемом материале, для этого ложкой Фолькманна легким движением соскабливают клетки эпителия канала влагалищной части шейки матки или вращательным движением ершика снимают поверхностный эпителий. Дистальный конец инструмента, которым проводилось взятие клеток, окунают и ополаскивают в 0,5 мл буфера (буфер прилагается к набору тест-системы), предварительно помещенного в пробирку эппендорф, плотно закрывают крышкой. Полученный материал может храниться в среде 199 при 4°С в течение 3 сут.

Взятие материала для определения ДНК Chl. trachomatis проводится аналогично. Обязательными условиями являются наличие клеток эпителия во взятом биоматериале и отсутствие контаминации другими микроорганизмами. Материал для исследования помещают в 0,5—1,0 мл стерильного 0,9% раствора хлорида натрия в пробирку эппендорф. Материал может храниться в замороженном виде при –20° С в течение 1 недели.

Для исследования антител в сыворотке крови методом ИФА берут кровь из локтевой вены и центрифугируют 20 мин при 1000 об./мин. Сыворотку крови отбирают микропипеткой. Полученная сыворотка может храниться в замороженном виде при –20°С в течение 3 мес.

Интерпретация результатов лабораторных исследований для диагностики генитального хламидиоза

Для лабораторной диагностики генитальной инфекции, вызванной Chl. trachomatis, необходимо установить наличие возбудителя, его антигена или ДНК в слизистой оболочке половых путей либо специфических антихламидийных антител.

Результаты серологического исследования интерпретируют следующим образом:

1.      Антитела IgG против Chl. trachomatis являются анамнестическими — это признак перенесенной в прошлом инфекции или хронической инфекции.

2.      Нарастание титра антител IgG, выявленное количественным ИФА-методом в парных сыворотках, взятых с интервалом 2 недели, — признак острой инфекции.

3.      Антитела классов IgM и IgA против Chl. trachomatis в крови — подтверждение инфекционного процесса.

4.      Одновременное выявление в крови антител IgM и IgG может быть признаком первичного заболевания или повторного инфицирования. Для диагностики стадии инфекционного процесса исследуют парные сыворотки количественным методом для определения динамики изменения титра антител обоих классов.

5.      Антитела IgA против Chl. trachomatis находятся в крови и секретах слизистых оболочек и обеспечивают местный иммунитет. Выявляются секреторные антитела при поражении хламидиями слизистых оболочек, поэтому положительный тест указывает на наличие инфекции. При латентном течении инфекции или низком титре антител IgA данный тест может быть отрицательным.

6.      Наличие антигена (метод ИФА или МИФ) или ДНК (метод ПЦР) Chl. trachomatis в эпителии цервикального канала или уретры указывает на локализацию хламидийной инфекции.

Возможные ошибки при лабораторной диагностике урогенитального хламидиоза:

1. При исследовании специфических антител класса IgG против Chl. trachomatis в сыворотке крови может быть получен отрицательный результат, если кровь взята в короткие сроки после инфицирования до наступления иммунологической реакции в организме. Отсутствие в периферической крови антител класса IgА возможно при локальной инфекции (например, цервицит).

2. Отрицательный результат определения ДНК или антигена Chl. trachomatis в биоматериале может быть получен при отсутствии клеток эпителия в пробе.

3. Ложные результаты исследований могут быть получены при несоблюдении правил и сроков хранения биоматериалов.

Перечень необходимого оборудования и реактивов:

1. Типовая серологическая лаборатория для иммуноферментного анализа.

1.2.Реактивы:

— тест-системы иммуноферментные для выявления иммуноглобулинов классов М, G, A против Chl. trachomatis;

— тест-системы иммуноферментные для выявления антигена Chl. trachomatis.

2. Оборудование и реактивы для метода иммунофлюоресценции.

2.1.Оборудование:

— микроскоп люминесцентный с системой фильтров для ФИТЦ (возбуждающий свет длиной волны 490 нм и эмиссией 520 нм).

 2.2. Реактивы:

— антитела диагностические для выявления антигенов Chl. trachomatis методом реакции непрямой иммунофлюоресценции, сухие.

3. Типовая ПЦР-лаборатория для метода полимеразной цепной реакции.

3.1. Реактивы:

— тест-системы для выделения ДНК Chl. trachomatis;

— тест-системы для детекции ДНК Chl. trachomatis.

Критерии излеченности генитального хламидиоза — отрицательные результаты МИФ (отсутствие антигена Chl. trachomatis) и ПЦР (отсутствие ДНК Chl. trachomatis) в эпителии цервикального канала и уретры или падение титра антител классов IgG, IgM и IgА в сыворотке крови, исчезновение клинических симптомов заболевания. Обязательно обследование половых партнеров. Лабораторный контроль эффективности лечения проводится у обоих партнеров трижды: через 3—4 недели после окончания лечения, а затем дважды через каждый месяц. При отсутствии эффекта антибактериального лечения титр специфических антител остается высоким спустя 1—1,5 мес. Двух- или трехкратное снижение титра специфических антител против Chl. trachomatis свидетельствует об успешной терапии. При локализации возбудителя в местах, доступных для получения биологического материала, содержащего антиген Chl. trachomatis (эпителий цервикального канала, уретры), для контроля излеченности используется метод иммунофлюоресценции или полимеразной цепной реакции. Следует учитывать, что МИФ и ПЦР позволяют выявлять антиген и ДНК нежизнеспособных хламидий после антибактериальной терапии, когда еще не произошла полная элиминация микроорганизмов из клеток. В этом случае может быть получен ложноположительный ответ. После антибактериальной терапии для выявления жизнеспособных микроорганизмов «золотым стандартом» в диагностике хламидийной инфекции признан культуральный метод с использованием чувствительной культуры клеток.

Таким образом, исходя из результатов нашего исследования сформулируем следующие выводы: 

1.      Диагностика генитальной хламидийной инфекции проводится лабораторными методами, основанными на определении возбудителя, его антигена, генома в биоматериале или на диагностике специфических антител против Chl. trachomatis в сыворотке крови.

2.      Серологическая диагностика хламидийной инфекции включает определение в крови специфических антител классов IgM, IgG и IgA против Chl. trachomatis. Для дифференцирования клинической формы заболевания необходимо качественное и количественное определение антител двух классов.

3.      Для диагностики локализации хламидийной инфекции (или как скрининг-метод) исследуют соскоб эпителия цервикального канала и/или уретры на антиген Chl. trachomatis с помощью МИФ. Верификация диагноза проводится путем выделения ДНК Chl. trachomatis методом ПЦР.

4.      При вульвовагинитах у девочек необходимо исследовать отделяемое из половых путей и соскоб эпителия влагалища одним из методов: антиген Chl. trachomatis выявляется с помощью МИФ, ДНК Chl. trachomatis — с помощью ПЦР.

5.      Для исследования образцов тканей целесообразнее использовать ПЦР.

6.      Контроль излеченности осуществляется лабораторно с помощью ПЦР-анализа и культуральным методом.

Литература 

1.      Барановская Е.И., Жаворонок С.В. // Эпидемиология и инфекционные болезни. — 2001. — № 6. — С.42—44.

2.      Барановская Е.И., Жаворонок С.В., Мельникова Л.Н. Хламидийная инфекция и репродуктивная функция женщин.— Мозырь, 2002. — 128 с.

3.      Мещерякова А.В., Демидова Е.М., Старостина Т.А. и др. // Акушерство и гинекология.— 2001.— №3.— С. 22— 24.

4.      Сухова Л.П., Машеро В.В., Щербаков В.М. // М-лы 2-й Всерос. науч.-практ. конф. «Полимеразная цепная реакция в диагностике и контроле лечения инфекционных заболеваний». — М., 1998.—С.37.

5.      Allaire A.D., Huddleston J.F., Graves W.L., Nathan L. // Infect. Dis. Obstet. Gynecol.— 1998. —N 6(3).—P. 116—122.

6.      Borisov I., Shopova E., Mainkhard K. // Akush. Ginekol. Sofiia.— 1999.— N 38(2).— P. 23—25.

7.      Chan E.L., Brandt K., Stoneham H. et al. // Arch. Pathol. Lab. Med.— 2000.— N 124(6).— P. 840—843.

8.      Chernesky M., Luinstra K., Sellers J. et al. // Sex. Transm. Dis.— 1998. —N 25(1).— P. 14—19.

9.      De-Barbeyrac В., Geniaux M., Hocke C. et al. // Diagn. Microbiol. Infect. Dis.—2000.— N 37(3).—P. 181—185.

10.     Dimitrakov J., Ganev V., Zlatanov T. et al. // Folia. Med. Plovdiv.— 1998.— N 40(3).— P. 24—28.

11.     Dong Z.W., Li Y., Zhang L.Y., Liu R.M. // Intern. J. Gynaecol. Obstet. — 1998.—N 61(1).— P. 29—32.

12.     Hinton E.L., Bobo L.D., Wu T.C. et al. // Fertil. Steril. — 2000.— N 74(1).— P. 152—157.

13.     Koskela P., Anttila Т., Bjorge T. et al. // Intern. J. Cancer.— 2000. — N 85(1).— P. 35—39.

14.     Li D., Zeng Y., Wu D. // Hunan. I. Ко. Та. Hsueh. Hsueh. Pao.— 1998.— N 23(2).— P. 169—171.

15.     Lu J., Liang Z., Han Z. // Hua. Hsi. I. Ко. Та. Hsueh. Hsueh. Pao.— 1997.— N 28(3).— P. 297—299.

16.     Ngeow Y.F., Hema V., Zakaria M. et al. // Malays. J. Pathol.— 1997.— N 19(2).— P. 127—132.

17.     Ouchi K., Hasegawa K., Maki R. et al. // Kansenshogaku. Zasshi.— 1998.— N 72(3).— P. 249—257.

18.     Pasternack R., Vuorinen P., Pitkajarvi T. et al. // J. Clin. Microbiol.— 1997.— N 35(2).— P. 402—405.

19.     Peipert J.F., Ness R.B., Soper D.E., Bass D. // Infect. Dis. Obstet. Gynecol.— 2000.— N 8(2).—P. 83—87.

20.     Rezacova J., Masata J., Sodja I. // Иeska Gynekol.— 1998.— N 63(4). — P. 276—279.

21.     Simoes J.A., Giraldo P.C., Faundes A. // Infect. Dis. Obstet. Gynecol.— 1998.—N 6(3).—P. 129—133.

22.     Thomas K., Coughlin L., Mannion P.T., Haddad N.G. // Hum. Reprod.— 2000.— N 15(5).—P.1079—1082.