• Поиск:

издатель: ЮпокомИнфоМед

Г.В. Илюкевич, В.Э. Олецкий, В.М. Смирнов

Современная тактика антибактериальной терапии госпитальных пневмоний

Белорусская медицинская академия последипломного образования

Госпитальная (нозокомиальная, внутрибольничная) пневмония (ГП) — заболевание, характеризующееся появлением на рентгенограмме «свежих» очагово-инфильтративных изменений в легких спустя 48 и более часов после госпитализации и клиническими данными, подтверждающими их инфекционную природу (новая волна лихорадки, гнойная мокрота или гнойное отделяемое трахеобронхиального дерева, лейкоцитоз и пр.), при исключении инфекций, которые находились в инкубационном периоде на момент поступления больного в стационар [8].

ГП занимает второе место среди всех нозокомиальных инфекций (13—18%) и является самой частой инфекцией (і45%) в отделениях интенсивной терапии и реанимации, где само пребывание больного повышает риск ее развития в 5—10 раз по сравнению с общесоматическим стационаром [22].

У пациентов, находящихся на искусственной вентиляции легких (ИВЛ), пневмонии протекают наиболее тяжело и составляют 36% всех случаев послеоперационных пневмоний [3, 32, 38]. Частота их развития — 22—55% в плановой хирургии, 34,5% в экстренной абдоминальной хирургии и 55% при остром респираторном дистресс-синдроме [2]. Частота развития пневмоний коррелирует с длительностью ИВЛ: в 1-е сутки — до 0,5% случаев, после 72 ч — до 50%, к 8—10-м суткам — до 80%, более 2 недель — почти 100% [3].

Затраты на терапию нозокомиальных инфекций в Англии достигают в среднем в 1 млрд фунтов стерлингов в год, в США — 1,6 млрд долларов. Лечение каждого случая ГП обходится дополнительно в 5000 долларов [31].

По данным различных авторов, частота госпитальной пневмонии колеблется в зависимости от местных условий, контингента больных и составляет порядка 5—15 случаев на 1000 госпитализированных, а при интубации трахеи возрастает в 6—20 раз [24]. Сведения о распространенности ГП в стационарах РФ ограничены [4].

Большинство ГП вызвано аэробными грамотрицательными бактериями (P. aeruginosa, E. coli, K. pneumoniae, Acinetobacter spp.), увеличивается частота заболеваний, обусловленных грамположительными микроорганизмами. Патогенные грибы, такие как Candida и Aspergillus Fumigatus, у иммунокомпетентных пациентов встречаются относительно редко [20, 40]. Вследствие распространения вируса гриппа, парагриппа, аденовирусов и респираторных синцитиальных вирусов ГП носит сезонный характер, встречается главным образом в педиатрических стационарах и намного реже у взрослых [2, 26].

Микробный спектр значительно варьирует не только среди лечебных учреждений, но и среди различных отделений того или иного стационара. Госпитальные или внутрибольничные пневмонии становятся все более острой проблемой в связи с неуклонным распространением полирезистентной инфекции, устойчивой к большинству известных антибактериальных агентов. Широкое (зачастую нерациональное) использование антибиотиков привело к формированию особых, устойчивых к антимикробной химиотерапии штаммов микроорганизмов, продуцирующих хромосомные и бета-лактамазы расширенного спектра действия.

По данным литературы, общая летальность у больных с ГП составляет 30—70% при наличии у них в критическом состоянии целого ряда потенциальных причин неблагоприятного исхода. Регрессионный анализ летальности, непосредственно связанной с ГП, показывает, что она находится на уровне 30—50% и зависит от флоры, ее вызвавшей [15]. Эту связь наглядно демонстрируют следующие данные: при ГП, вызванной P. аeruginosa или микроорганизмами семейства Enterobacteriaceae, летальность составляет 25—35%, при пневмонии, вызванной S. аureus, — 15—35%, анаэробами в сочетании с грамотрицательными бактериями — 10—20%, H. influenzae и S. pneumoniae — 10—20% [14]. Большинство случаев неэффективного лечения ГП связано с наличием таких полирезистентных возбудителей, как P. aeruginosa, представителей рода Acinetobacter, Klebsiella, Enterobacter и метициллин-резистентных штаммов S. aureus.

P. aeruginosa занимает ведущее место среди грамотрицательных возбудителей ГП и обладает склонностью к быстрому развитию резистентности ко всем известным типам антибактериальных препаратов, которая на фоне монотерапии достигает 30—50%. Комбинация различных антибактериальных препаратов заметно не влияет на данный процесс, и ее положительный эффект остается спорным. Имеется единственное сообщение о снижении риска смерти от инфекции, вызванной синегнойной палочкой, при комбинации карбапенема с аминогликозидом [12]. Механизмы такой резистентности связаны с особенностями трансмембранных транспортных систем, находящихся под контролем генетических мутаций, а также с наличием передаваемых с помощью плазмид металло-бета-лактамаз, активных в отношении карбапенемов, антисинегнойных пенициллинов и цефалоспоринов [35].

Представители рода Acinetobacter, несмотря на значительно меньшую вирулентность по сравнению с P. aeruginosa, представляют существенную проблему из-за свойственной им резистентности к антибиотикам большинства фармакологических групп. Арсенал антибактериальных препаратов, активных в отношении Acinetobacter, невелик. Он включает карбапенемы, сульбактам (компонент комбинированного препарата ампициллин-сульбактам с прямым антибактериальным эффектом в отношении Acinetobacter) и полимиксин. Чувствительность Acinetobacter к амногликозидам варьирует в широких пределах, причиной неудовлетворительных результатов лечения может быть низкая проницаемость аминогликозидов в легочную ткань. Препятствием для широкого внутривенного применения полимиксина является его высокая нефротоксичность [42].

Представители рода Klebsiella резистентны к ампициллину и другим аминопенициллинам. Резистентность к цефалоспоринам связана с синтезом бета-лактамаз расширенного спектра действия (БЛРС), которые передаются специфическими плазмидами и обычно несут резистентность к аминогликозидам и некоторым другим препаратам. Однако большинство штаммов, продуцирующих такие плазмиды, остаются чувствительными к карбапенемам и цефепиму [44].

Метициллин-резистентные штаммы S. aureus (MRSA) продуцируют пенициллинсвязывающие белки с низким сродством ко всем бета-лактамам. Общепринятым стандартом в лечении инфекции, вызванной MRSA, остается ванкомицин. Вместе с тем в ряде сообщений показано, что при обычной дозировке (1,0 г через 12 ч) частота клинических неудач достигает 40% [13, 37]. Использовались комбинации ванкомицина с другими агентами, например рифампицин, аминогликозиды, но проспективные клинические данные об эффективности такого подхода отсутствуют. Ретроспективный фармакокинетический анализ показывает, что причиной неудач может быть недостаточная дозировка ванкомицина [13]. Некоторые авторы пытались увеличить концентрацию ванкомицина до 15 мг/л и более, но эффект такого подхода также остается недоказанным. Использование постоянной инфузии не дало положительного результата по сравнению с обычным режимом введения дважды в сутки. Среди новых препаратов, испытанных при лечении ГП, вызванной MRSA, сходную, а возможно, и более высокую эффективность по сравнению с ванкомицином показал линезолид. Его преимущества — лучшая проницаемость в ткани легких и возможность безопасного использования у больных с угрозой развития или уже имеющейся почечной недостаточностью [34]. Назначение дозировки ванкомицина у больных с нарушением функции почек затруднено и требует множества повторных исследований концентрации в сыворотке крови, что связано с высоким риском нефротоксического эффекта, особенно в тех случаях, когда назначение ванкомицина сочетается с аминогликозидами.

В условиях высокой, постоянно нарастающей резистентности микробной флоры ключевое значение имеет эффективность антибактериальной терапии на самом раннем этапе, а ее коррекция через 2—3 суток после начала заболевания может не сказаться на результатах лечения [18, 28, 29]. В связи с этим раннее назначение пациенту с ГП адекватной эмпирической антимикробной терапии значительно снижает летальность и улучшает прогноз [11]. Этот постулат положен в основу современного подхода к построению антибактериального лечения ГП (рисунок, см. бумажную версию журнала).

При выборе эмпирической терапии ГП следует учитывать [22]:

1.      Сведения о наиболее вероятных возбудителях ГП в данном лечебном учреждении (подразделении больницы) и их чувствительности к антибиотикам.

2.      Тяжесть состояния больного.

3.      Продолжительность госпитализации и/или ИВЛ до развития пневмонии.

4.      Предшествующую антибактериальную терапию (по каким показаниям назначалась и каков ее характер).

5.      Фармакокинетические и фармакодинамические особенности назначаемого в данный момент антибиотика или антибиотиков, спектр их активности.

6.      Первичную микробиологическую оценку биологических субстратов — микроскопия с окраской по Граму (мокрота, промывные воды бронхов и т. д.).

Общий подход к ведению пациентов с ГП основывается на выполнении следующих мероприятий [8]:

1.      Диагностические исследования, направленные на уточнение нозологического диагноза (исключение синдромосходных заболеваний), идентификацию возбудителя, оценку тяжести заболевания.

2.      Неотложное начало адекватной антибактериальной терапии (после взятия материала для микробиологического исследования).

3.      Дополнительные мероприятия — профилактика эндогенного и экзогенного инфицирования, симптоматическая и патогенетическая терапия, профилактика (коррекция) органной дисфункции и/или септического шока.

Выделяют следующие критерии тяжелого течения ГП:

·        выраженная дыхательная недостаточность (ЧД>30 в минуту);

·        выраженная гипоксемия (РаО2<60 мм рт. ст., SаО2<90% или РаО2/FiO2<240);

·        острый респираторный дистресс-синдром;

·        потребность в ИВЛ;

·        многодолевое поражение или деструкция легочной ткани, быстрая отрицательная динамика на рентгенограмме;

·        признаки тяжелого сепсиса или септического шока;

·        температура тела >39°С или <36°С;

·        показатели артериального давления (90 мм рт. ст. систолическое АД и <60 мм рт. ст. — диастолическое);

·        признаки острой почечной недостаточности (диурез менее 20 мл/ч и/или креатинин крови>177 мкмоль/л и/или потребность в гемодиализе);

·        потребность в вазопрессорах более 4 ч;

·        нарушение сознания.

Цель данного алгоритма — обеспечить своевременное начало эффективной антибиотикотерапии. Доказано увеличение летальности при необходимости коррекции антибактериальной терапии на 2—3-е сутки по сравнению с теми случаями, когда правильный выбор антибиотиков был сделан на старте лечения [18, 25, 27, 29, 30, 41]. Максимально допустимый период между подозрением на ГП и введением антибиотиков не должен превышать 4 ч [25]. На раннем этапе выбор тактики антибактериальной терапии строится на клинических данных. Наиболее приемлемая комбинация критериев для диагностики пневмонии — появление новых или распространение имеющихся инфильтративных изменений на рентгенограмме легких в сочетании с двумя из следующих клинических проявлений инфекции: повышение температуры тела более 38°С, лейкоцитоз или лейкопения, выделение гнойной мокроты. На фоне ИВЛ к перечисленным признакам инфекции добавляется снижение оксигенации крови.

Ключевой момент в выборе стартовой эмпирической антибактериальной терапии — выявление факторов риска в отношении присутствия полирезистентной микрофлоры (позднее начало ГП — 5 дней и более с момента госпитализации, высокая частота полирезистентной инфекции в данном отделении, курс антибактериальной терапии в предшествующие 3 мес, хронический гемодиализ, лечение ран в предшествующие 30 дней, иммунодефицитные состояния вследствие заболеваний или на фоне лечения). Все эти больные должны рассматриваться как пациенты с высоким риском присутствия полирезистентной микрофлоры и получать соответствующее лечение независимо от сроков выявления ГП. Безусловно, характер микрофлоры и ее устойчивость к антибактериальным препаратам существенно различаются как между разными медицинскими учреждениями, так и между отделениями в одной и той же больнице. Для построения схемы стартовой эмпирической терапии необходимо иметь данные об особенностях местной микрофлоры. Для этого в идеале каждый стационар и каждое отделение интенсивной терапии должны опираться на результаты антибиотикограммы, обновляемой так часто, как это только возможно. Тяжелое течение ГП, особенно у пациентов ОИТР, находящихся на ИВЛ, требует скорейшего применения наиболее мощных антибиотиков, активных в отношении вероятных возбудителей. В настоящее время признается роль тех антибактериальных средств, которые в меньшей степени способствуют возникновению резистентности и обладают достаточным эрадикационным потенциалом. К ним в первую очередь относятся карбапенемы (меропенем, имипенем) и цефалоспорины IV поколения (цефепим). Использование деэскалационного режима антибактериальной терапии у таких больных подтверждено рядом клинических исследований [16, 22, 33, 36]. Примерные схемы лечения ГП представлены в табл. 1 (см. бумажную версию журнала).

Изучена эффективность цефепима при ГП, вызванной энтеробактериями, продуцирующими БЛРС. Клиническая эффективность цефепима при ГП, обусловленной энтеробактериями без продукции БЛРС и продуцентами БЛРС, составила соответственно 91 и 88%, цефалоспоринов III поколения (цефотаксим или цефтриаксон) — 63 и 40%, фторхинолонов (ципрофлоксацин или пефлоксацин) — 46 и 29%. Эрадикация продуцентов БЛРС была в 2 раза выше при применении цефепима (88%) по сравнению с цефалоспоринами III поколения и фторхинолонами (43 и 40%). Полученные данные свидетельствуют о том, что эффективность цефепима при ГП высокая и не снижается, если возбудитель продуцирует БЛРС [9].

Широкий спектр антимикробной активности цефепима в отношении S.pneumoniae, S.aureus, Enterobacteriaceae, P. aeruginosa (наиболее частых возбудителей ГП) и способность препарата преодолевать механизмы резистентности позволяют рекомендовать его для стартовой эмпирической антибактериальной терапии ГП в качестве замены цефалоспоринов III поколения.

В литературе ведется дискуссия в отношении эффективности монотерапии по сравнению с комбинацией антибиотиков. В случае полирезистентной микрофлоры выбор склоняется к комбинированному лечению в связи с наличием синергизма in vitro, который очень трудно подтвердить или опровергнуть в клинических условиях, и тем предположением, что при использовании комбинации антибиотиков хотя бы один из них может оказаться активным в отношении полирезистентной инфекции. Среди доступных комбинаций наибольшей широтой спектра действия обладает сочетание карбапенема с амикацином и ванкомицином либо сочетание карбапенема с антисинегнойным хинолоном и ванкомицином, достигающими активности в отношении P. aeruginosa и MRSA. Альтернативой ванкомицину может быть линезолид, показавший сходную антибактериальную активность при меньшей токсичности и большем накоплении в ткани легких. Выбор препаратов базируется на имеющихся результатах исследований устойчивости местной микрофлоры, вероятных побочных эффектах и предшествовавшей антибактериальной терапии таким образом, чтобы не использовать антибиотики одной и той же группы.

Неотъемлемым условием успеха является оптимальный режим дозирования с учетом фармакокинетических особенностей и механизма действия препаратов. Рекомендуемые дозировки и режимы введения, подтвердившие свою эффективность в клинических исследованиях у больных с сохранной функцией почек, представлены в табл. 2 (см., бумажную версию журнала) [24].

После получения результатов бактериологических исследований эмпирическая антибактериальная терапия может потребовать модификации. С одной стороны, когда выделены резистентные или неожиданные возбудители у больного, не отвечающего на начальное лечение, с другой — у больного с положительным ответом, если выделенные возбудители чувствительны к антибиотикам менее широкого спектра действия и можно исключить наличие таких возбудителей, как P. aeroginosa, Acinetobacter spp., может быть проведена деэскалация антибактериальной терапии [43].

Клинические признаки разрешения инфекционного процесса — снижение температуры, улучшение оксигенации крови, нормализация числа лейкоцитов — обычно появляются через 48—72 ч после начала лечения, т.е. режим антибактериальной терапии не следует изменять на протяжении этого времени, за исключением случаев явного ухудшения клинического состояния или получения убедительных микробиологических данных, требующих смены антибиотиков.

Вопрос о возможности ранней микробиологической оценки эффективности антибиотиков остается открытым. В то же время серия микробиологических исследований в динамике может выявить разрешение или возвратное течение инфекционного процесса, а также присоединение новых возбудителей.

Значение рентгенографии легких в ранней диагностике разрешения инфекции на фоне тяжелой пневмонии невелико. Обычно на ранней стадии имеет место прогрессивное течение рентгенологических изменений, особенно на фоне бактериемии или высоковирулентной инфекции. Рентгенологическое разрешение существенно отстает от клинических показателей, особенно у пациентов старшего возраста, на фоне хронических обструктивных заболеваний легких и левожелудочковой недостаточности. Вместе с тем быстрое ухудшение рентгенологической картины с мультилобарным распространением процесса, увеличением размеров инфильтратов на 50% в течение 48 ч, появление признаков деструкции, плеврального выпота свидетельствуют о неэффективной антибактериальной терапии [39].

Контрольное рандомизированное исследование показывает, что при адекватной стартовой антибактериальной терапии, если возбудителем пневмонии не является P. aeruginosa или Acinetobacter spp., длительность лечения может быть сокращена (без отрицательных последствий) с обычных 14—21 до 7—8 суток [19].

Исход терапии ГП определяется по клиническим и микробиологическим критериям. С клинической точки зрения могут отмечаться улучшение, разрешение, замедленное разрешение, рецидив, неэффективность терапии и летальный исход. С микробиологической позиции различают эрадикацию, суперинфекцию (появление нового возбудителя), рецидив (элиминация с последующим появлением первоначального возбудителя) или персистенцию.

Причины неэффективности антибактериальной терапии ГП [4]:

1.      Несанированный очаг инфекции.

2.      Тяжесть состояния больного (АРАСНЕ II>25).

3.      Высокая антибиотикорезистентность возбудителей ГП.

4.      Персистенция проблемных возбудителей (P. aeruginosa, MRSA, Acinetobacter spp.).

5.      Микроорганизмы «вне спектра» действия эмпирической терапии (Candida spp., Aspergillus spp., Legionella spp.).

6.      Развитие суперинфекции (Enterobacter spp., Pseudomonas spp., грибы, C. difficile).

7.      Неадекватный выбор препарата;

8.      Позднее начало адекватной антибактериальной терапии.

9.      Несоблюдение режима дозирования препаратов (способ введения, разовая доза, интервал введения).

10. Низкие дозы и концентрация в плазме и тканях.

Профилактика ГП включает комплекс взаимосвязанных мероприятий организационного, технического и медицинского характера, направленных на борьбу с эндогенным и экзогенным инфицированием [6, 8, 10, 17, 23]:

1.      Своевременное выявление и адекватная хирургическая санация очагов инфекции.

2.      Селективная деконтаминация ЖКТ и энтеросорбция.

3.      Нормализация функции ЖКТ.

4.      Санация дыхательных путей у больных с ХОЗЛ.

5.      Ограничение использования миорелаксантов и депрессантов.

6.      Тщательный туалет ротоглотки.

7.      Аспирация секрета из надманжеточного пространства.

8.      Гигиеническая обработка кожных покровов пациента.

9.      Осторожное отношение к назогастральной и назоинтестинальной интубации.

10. Осторожное применение средств, повышающих рH желудочного сока.

11. Подъем головного конца кровати >300.

12. Использование стерильных одноразовых расходных материалов, соприкасающихся с дыхательными путями больного.

13. Эффективная дезинтоксикация и стерилизация аппаратов ИВЛ, увлажнителей, бронхоскопов и др.

14. Своевременное удаление конденсата в контуре.

15. Использование аппаратов ИВЛ более совершенных конструкций.

16. Использование бактериальных фильтров в дыхательном контуре.

17. Своевременная смена дыхательных контуров и интубационных трубок.

18. Тщательная обработка рук медицинского персонала и использование стерильных одноразовых перчаток.

19. Изоляция пациентов, имеющих инфекционные осложнения.

20. Ограничение длительности интубации трахеи и ЖКТ.

21. Сокращение предоперационного периода.

 

Литература 

1.      Гайдуль К.В., Лимонов В.Л. Нозокомиальная пневмония. Этиология, патогенез, диагностика, лечение и профилактика: Пособие для врачей. — М., 2004.

2.      Гельфанд Б.Р., Белоцерковский Б.З., Проценко Д.Н. Нозокомиальная пневмония в хирургии: Метод. рекомендации РАСХИ. — М., 2004.

3.      Гельфанд Б.Р., Гологорский В.А., Белоцерковский Б.З. и др. // Consilium Medicum. — 2001. — Т.3, N 7.

4.      Гельфанд Б.Р., Гологорский В.А., Белоцерковский Б.З. и др. Нозокомиальная пневмония, связанная с искусственной вентиляцией легких, у хирургических больных. — М., 2000.

5.      Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / Под ред. Л.С. Страчунского, Ю.Б. Белоусова, С.Н. Козлова. — М.: Боргес, 2002.

6.      Руководство по инфекционному контролю в стационаре / Пер. с англ.; Под ред. Р. Венцеля, Т. Бревера, Ж.П. Бутцлера. — Смоленск: МАКМАХ, 2003.

7.      Страчунский Л.С., Решедько Г.К. и др. Рекомендации по оптимизации антимикробной химиотерапии нозокомиальных инфекций, вызванных грамотрицательными возбудителями в ОИТР: Пособие для врачей. — Смоленск: Боргес, 2002.

8.      Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Страчунский Л.С. и др. Нозокомиальная пневмония у взрослых: практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике: Пособие для врачей. — М., 2005.

9.      Яковлев С.В. // Мед. новости. — 2005. — N 3. — С. 37—43.

10.     A Guide to Infection Control in the Hospital. An official publication of the International Society for Infection Diseases. 2th ed. / Ed. R. Wenzel, T. Brevwer, J.-P. Butzler. — London: D.C. Dacker Inc. Hamilton, 2000.

11.     Alvarez-Lerma F. // Intensive Care Med. — 1996. — V. 22. — P.387—394.

12.     Blot F., Raynard B., Chachaty E. et al. // Amer. J. Respir. Crit. Care Med. — 2000. — V. 162. — P. 1731—1737.

13.     Campbell G.D., Niederman M.S., Broughton W.A., Cunha B.A. // Med. Clin. North Amer. — 2001. — V.85 (1). — P. 79—114.

14.     Carted A., Hornick D. // Amer. J. Respir. Crit. Care Med — 1999. — V. 20, N 3. — P. 681—691.

15.     Center for Diseases Control and Prevention. Guideline for prevention of nosocomial pneumonia // Infect. Control Hosp. Epidemiol. — 1994. — V. 15. — P. 2102—2106.

16.     Chastre J., Wolff M., Fagon J.Y. et al. // JAMA. — 2003. — V. 290. — P. 2588—2598.

17.     Cosgrove S.E., Kaye K.S., Eliopoulous G.M., Carmeli Y. // Arch. Intern. Med. — 2002. — V. 162. — P. 185—190.

18.     Cunha B.A. // Med. Clin. North Amer. — 2001. — V. 85, N 1. — P. 79—114.

19.     El-Ebiary M., Torres A., Fabregas N. et al. // Amer. J. Respir. Crit. Care Med. — 1997. — V. 156. — P. 583—590.

20.     Fagon J.Y., Chastre J. // Eur. Respir. J. — 2003. — V. 42. — P. 77—83.

21.     Fagon J.Y., Chastre J., Wolff M. et al. // Ann. Intern. Med. — 2000. — V. 132. — P. 621—630.

22.     Fowler R.A., Flavin K.E., Barr J. et al. // Chest. — 2003. — V. 123. — P. 835—844.

23.     Garnacho-Montero J., Ortiz-Leyba C., Jimenez-Jimenez F.J. et al.// Clin. Infect. Dis. — 2003. — V. 36. — P. 1111—1118.

24.     Guidelines for prevention of nosocomial pneumonia // MMWR. — 1997. — V. 46. — P. 1—79.

25.     Guidelines for the Management of Adults with Hospital-acquired, Ventilator-associated and Healthcare-associated Pneumonia // Amer. J. Respir. Crit. Care Med. — 2005. — V. 171. — P. 388—416.

26.     Heyland D.K., Cook D.J., Griffith L. et al. // Amer. J. Respir. Crit. Care Med. — 1999. — V. 159. — P. 1249—1256.

27.     Hilf M., Yu V.L., Sharp J. et al.// Amer. J. Med. — 1989. — V. 87. — P. 540—546.

28.     Ibrahim E.H., Sherman G., Ward S. et al. // Chest. — 2000. — V. 118. — P. 146—155.

29.     Iregui M., Ward S., Sherman G. et al. // Chest. — 2002. — V. 122. — P. 262—268.

30.     Jarvis W.R. // Infect. Control. Hosp. Epidemiol. — 1996. — N 8. — P. 552—557.

31.     Kollef M. // Infect. Med. — 2000. — V. 17. — P. 278—283.

32.     Kollef M.H. // Crit. Care Med. — 2004. — V. 32. — P. 1396—1405.

33.     Kollef M.H., Sherman G., Ward S., Fraser V.J. // Chest. — 1999. — V. 115. — P. 462—474.

34.     Livermore D.M. // Clin. Infect. Dis. — 2002. — V. 34. — P. 634—640.

35.     Loo V.G., Bertrand C., Dixonet C. al. // Infect. Control Hosp. Epidemiol — 1996. — V. 17. — P. 360—364.

36.     Lorenz J., Bormann K.F., Bauer T.T. et al. // Pneumologia. — 2003. — V. 57, N 9. — P. 532—545.

37.     Luna C.M., Blanzaco D., Niederman M.S. et al. // Crit. Care Med. — 2003. — V. 31. — P. 676—682.

38.     Luna C.M., Vujacich P., Niederman M.S. et al. // Chest. — 1997. — V. 111. — P. 676—685.

39.     Malangoni M.A., Crafton R., Mocek F.C. // Amer. J. Surg. — 1994. — V. 167. — P. 250—255.

40.     Moise P.A., Forrest A., Bhavnani S.M. et al. // Amer. J. Health Syst. Pharm. — 2000. — V. 57. — P.4—9.

41.     Rello J., Ausina V., Ricart M. et al. // Chest. — 1993. — V. 104. — P. 1230—1235.

42.     Tablan O.C., Anderson L.J., Besser R. et al. // MMWR Recomm. Rep. — 2004. — V. 53 (RR-3). — P. 1—36.

43.     Wunderink R.G., Rello J., Cammarata S.K. // Chest. — 2003. — V. 124. — P. 1789—1797.

44.     Мontravers P., Veber B., Auboyer C. et al. //Crit. Care Med. — 2002. — V. 30. — P. 368—375.

Медицинские новости. – 2005. – №9. – С. 30-36.

Внимание! Статья адресована врачам-специалистам. Перепечатка данной статьи или её фрагментов в Интернете без гиперссылки на первоисточник рассматривается как нарушение авторских прав.

Содержание » Архив »

Разработка сайта: Softconveyer